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文檔簡介
1、1980年以前,人們普遍認為包涵體中的蛋白質是沒有活性的,需要在體外進行復性后才能使蛋白質具有活性。近年來,越來越多的研究表明,某些蛋白質或酶,雖然表達在包涵體中,但依然保留其活性,這種包涵體被稱為活性包涵體(ActiveInclusion Bodies)。與可溶性表達的酶相比,在活性包涵體中表達的酶具有很多優(yōu)點,例如增加蛋白的表達量,提高蛋白質的穩(wěn)定性,易于提取和純化,并且可以重復使用等。活性包涵體中的蛋白質,是一種不可溶的聚集體,通
2、常伴隨著蛋白質構象的改變。然而,由于酶表達在活性包涵體中而導致酶的反應和底物專一性發(fā)生變化這一觀點暫未被報道。為了解決這個問題,選擇了在生物技術和工業(yè)上有廣泛應用的三種酶。尿卟啉原Ⅲ甲基轉移酶(UroporphyrinogenⅢ methyltransferase,UMT),作為一種紅色熒光標記,能夠催化多步甲基化反應。真核生物的絲氨酸消旋酶(Serineracemase,SR),能夠催化D-絲氨酸及其對映的異構體L-絲氨酸的消旋反應,
3、以及D-和L-絲氨酸的脫水反應。人類D-氨基酸氧化酶(human D-amino acid oxidase,hDAAO)能夠催化多種D-氨基酸的高效氧化。已報道,表達在包涵體中的酵母DAAO是具有活性的,目前還沒有關于表達在包涵體中的UMT和SR的催化活性的報道。構建了可以表達為可溶的和不可溶的兩種狀態(tài)的三種酶,在大腸桿菌中過表達這三種酶,并且對它們的活性進行了分析。研究結果如下:
1.酶的構建。無標簽大麥UMT突變體UMT8
4、是可溶性表達的,由于融合標簽對熒光蛋白的催化作用幾乎沒有影響,構建了C-端融合了疏水標簽ELK16的UMT8,從而降低了UMT8蛋白的可溶性表達。構建無標簽玉米SR則是為了防止N或C端融合標簽對玉米SR的催化活性具有潛在影響。hDAAO融合SUMO標簽,可以促進蛋白的可溶性表達。所有的基因都是在T7啟動子的控制下表達的。
2.在大腸桿菌中過表達重組蛋白。構建的重組質粒轉化大腸桿菌BL21(DE3)。將可溶的和不可溶的目的蛋白進
5、行分離和SDS-PAGE檢測。融合ELK16的UMT8在包涵體中表達。無標簽的玉米SR和融合了SUMO的hDAAO在上清和沉淀中都有表達。
3.大麥UMT8蛋白可溶態(tài)和不可溶態(tài)的熒光分析。紫外光譜掃描結果顯示,表達大麥UMT8的可溶性蛋白有兩個吸收峰,分別是在354nm和375nm,它們是二甲基化和三基化反應的熒光產物的特異性吸收峰,相反地,表達大麥UMT8-ELK16的可溶性蛋白的這兩個吸收峰明顯減小,說明UMT8形成不溶性
6、聚集體使其催化活性降低。熒光光譜掃描分析,結果顯示融合ELK16標簽,降低了大麥UMT8三步甲基化反應的熒光產物在細胞內的聚集,大麥UMT8蛋白的可溶性降低會抑制其催化多步甲基化反應。
4.可溶態(tài)和不可溶態(tài)的玉米SR催化消旋反應和脫水反應的活性測定??扇苄员磉_的玉米SR同時具有消旋酶活性和脫水酶活性,而不可溶的玉米SR的脫水酶活性喪失。體外添加甘油和還原劑二硫蘇糖醇(DTT),二者對兩種狀態(tài)的玉米SR的催化反應專一性具有不同的
7、影響。結果說明玉米SR在活性包涵體中表達時,改變了其催化反應的特異性。
5.表達在活性包涵體中的SUMO-hDAAO的產量與底物專一性分析。對融合蛋白的包涵體相對產量進行測定,28℃誘導的SUMO-hDAAO包涵體占細胞濕重的比值為17.71%;而在37℃誘導的條件下,相對比值提高到了37.99%。不可溶的hDAAO也顯示出相應的氧化三種D-氨基酸的底物特異性,但可溶的和不可溶的hDAAO蛋白質之間的催化反應活性的改變略有不同
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